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[生产管理] 摇瓶工艺—细胞传代和冻存

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药徒
发表于 2024-6-23 17:55:28 | 显示全部楼层 |阅读模式

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本帖最后由 名字不重要 于 2024-6-23 17:58 编辑



一. 准备工作
参见“摇瓶工艺—细胞复苏。

二. 操作流程:
2.1 细胞复苏
参见“摇瓶工艺—细胞复苏”。

2.2 传代扩增
从培养第2天开始取样计数,传代前细胞培养时间一般不超过4天。

用Vi-cells细胞计数仪检测活细胞密度和活率,判断细胞是否符合传代培养标准。若细胞符合传代标准,完成细胞传代操作。否则继续培养,且连续培养不超过4天。

根据工艺要求,将种子液全部传代(用这种方法,多一个参数“取样前/后理论培养体积”--忽略摇瓶挥发体积)或者部分传代,进行1~n次传代扩增;每次传代时,根据计算结果,确定所用摇瓶规格及摇瓶数量。传代完成后,根据计数结果判断是否符合传代扩培后标准。

注意1:根据细胞液理论体积用来计算总细胞数,以及用来计算传代后培养体积和预热培养基体积,以及可能添加MSX母液量的计算。

注意2:摇瓶挥发体积与摇瓶种类、培养基、摇床参数都有关系。

根据目标冻存支数(需要满足最小冻存支数要求),决定目标所需细胞数量,确定最终培养体积和密度。

根据预估传代次数和生长趋势,进行冻存前评估,若细胞符合冻存标准,完成细胞冻存操作。否则,继续培养并每天取样计数,直至符合标准后完成冻存操作,连续培养不超过4天。具体如下:

根据密度和理论培养体积计算理论总细胞数(各个摇瓶细胞数相加),按照10×106 cells/支(有时是15×106cells/支),1 mL/支规格冻存细胞,计算理论最大冻存细胞支数(最大冻存支数向下取整,如计算的理论最大冻存支数为200.9支,则向下取整,理论最大冻存支数为200支)。判断是否满足目标细胞冻存支数要求,若满足,则进行冻存操作。

注意:需要考虑到理论培养体积的挥发,实际培养体积会减少,理论最大冻存支数要有足够操作空间。

2.3 细胞冻存
合瓶:若冻存细胞由1个以上摇瓶培养,则需要将多个摇瓶细胞合并并混匀后取样,并重新计数。计算合并后理论冻存细胞支数(同上描述)。

注意:若预估细胞数足够,合瓶操作也可在冻存液配制完成后再进行。

根据细胞计数结果,确认是否将所有细胞液进行冻存,分为全部冻存和部分冻存,差别在于配制冻存液体积,然后计算。

全部冻存:按照10×106cells/支(有时是15×106 cells/支),1 mL/支规格冻存细胞,计算细胞冻存液体积(最小配制体积至少向上取任意整数,如5.1 mL,则至少配制6 mL,考虑损耗可多配制,使用时根据冻存支数用移液管量取)。所需细胞冻存液体积=活细胞密度×取样后理论培养体积÷(10×106),按照理论体积计算(实际有挥发),冻存液体积足够。

部分冻存:所需细胞液体积=计划冻存支数×冻存密度÷活细胞密度(体积向上取整);按照计划冻存支数及1 mL/支规格冻存细胞,计算细胞冻存液体积(若为1 mL/支,所需细胞冻存液体积=计划冻存支数)。

配制冻存液:根据冻存细胞支数计划,计算所需细胞冻存液的体积,从而得出所需培养基和DMSO体积。培养基与 DMSO按体积比9:1添加配制细胞冻存液,混匀后,将配制完成的细胞冻存液置2-8℃冰箱预冷至少30 min。考虑损耗可多配制冻存液。

冻存管标签粘贴:在生物安全柜内提前将冻存标签贴于冻存管上,按照顺序粘贴并放置,防止冻存过程编号混淆。(标签要QA协助领用、使用和销毁多余标签)

细胞分装和离心:在生物安全柜内,缓慢摇匀合瓶中的细胞,用无菌移液管将所需细胞转至离心管中,分装过程中记录细胞悬液分装支数,规格及分装总体积。800 rpm,离心5 min,离心后将上清液在生物安全柜中转移至新离心管中(可能需要送检上清无菌和支原体)。如冻存部分细胞液,则将剩余细胞液废弃,并记录废弃数量。

由于部分冻存和全部冻存,需要确认最终实际分装体积(主要影响“全部冻存情况”,因取样及挥发,实际分装后培养体积少于理论培养体积属于正常情况,细胞实际冻存时以分装实际体积为准)。根据细胞悬液实际分装体积,确认冻存细胞支数。按照10×106 cells/支,1 mL/支规格冻存细胞,计算冻存细胞支数(最大冻存支数向下取整数,如理论冻存200.9支,实际冻存200支)。细胞冻存支数=活细胞密度×分装体积÷(10×106)。

重悬准备:取出预冷完成的细胞冻存液以及分装的离心管,清洁后转入生物安全柜,无菌擦拭。注意:离心管不可倾斜,保持向上放置。

细胞重悬:离心后用无菌移液管吸取并弃去上清液后(或者无菌倒掉),加入适量冻存液重悬细胞(注意:用于重悬的冻存液体积需要记录,最好固定一个恰当的数值,方便计算,后续合瓶后添加至目标体积)。最后根据需要,将所有离心管中的细胞悬液合并,最后加至目标冻存液体积并缓慢混匀,准备分装冻存。

细胞分装:将混匀状态下的细胞悬液全部分装至2 mL冻存管内,每管分装1 mL。注意:分装过程中,每完成一次移液管取样分装,下次取样分装前需混匀细胞并更换移液管。

细胞冻存:完成分装后,根据需要选择冻存方法。使用程控降温仪进行冻存,或者使用程序降温盒进行冻存。

程控降温仪:冻存管转入细胞冻存盒,放入程控降温仪,启动冻存程序,进行-80 ℃冻存降温。具体程序:腔体先降至4℃后,Ramp 1.0℃/min 降至样品温度为-4.0℃,Ramp25.0℃/min降至腔体温度为-40℃,Ramp 10.0℃/min降至腔体温度为-12.0℃,Ramp 1.0℃/min 降至腔体温度为-40℃,Ramp 10.0℃/min 降至腔体温度为-80℃,程序结束。完成该步骤后,将细胞转移到液氮容器中,长期存储。

程序降温盒:冻存管转入已经预冷完成(2~8℃)的程序降温盒,然后放入-80 ℃冰箱进行冻存。在-80 ℃冰箱进行冻存24 h后,转移至液氮容器。

冻存申请(入库):填写细胞冻存申请单,确认细胞库台账登记准确。细胞转移至液氮容器24 h后,方可复苏冻存细胞进行冻存细胞评估。根据需要,另起批记录记录该操作过程。

操作环境监测:生物安全柜内操作结束时,完成表面微生物(五指和/或设备表面)、悬浮粒子(QC左右各取样一个)及浮游菌取样(QC左右各取样一个)。

此外,细胞冻存操作过程,监测沉降微生物。将培养皿分别放置在生物安全柜的左侧、中间和右侧,监测细胞冻存的整个过程。培养皿放置完成后,不可移动,直至冻存操作完成后,由放置人员收回培养皿。

请验内容:复苏开始和结束,冻存上清无菌和支原体,冻存开始和结束

细胞冻存后复苏评估:细胞建库完成后,取出3支细胞进行复苏,具体操作过程参见下期的细胞评估。

注:MSX的配置为50mM (粉末加水再过滤),-20 ℃避光储存,有效期12个月。

注:培养基检测结果包含pH、渗透压、浊度、内毒、完整性等。



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药生
发表于 2024-6-24 08:01:16 | 显示全部楼层
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药生
发表于 2024-6-24 09:22:50 | 显示全部楼层
这内容怎么看起来那么熟悉
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药徒
发表于 2024-6-24 10:32:08 | 显示全部楼层
像我们这样的细胞,复苏没有用到摇瓶。
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药徒
 楼主| 发表于 2024-6-25 22:23:47 来自手机 | 显示全部楼层
逸清草堂 发表于 2024-06-24 09:22
这内容怎么看起来那么熟悉

是吗?互相学习
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药徒
 楼主| 发表于 2024-6-25 22:24:53 来自手机 | 显示全部楼层
走吗 发表于 2024-06-24 10:32
像我们这样的细胞,复苏没有用到摇瓶。

贴壁细胞吗?工艺不一样的
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