坐骨神经模型|动物模型构建|坐骨神经慢性缩窄性损伤（CCI）模型

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CCI模型是用铬制羊肠线环扎坐骨神经干制作而成，羊肠线遇水膨胀，对神经形成慢性束缚性损伤，导致部分神经纤维变性坏死；另一方面CCI模型引起的疼痛还与此种可吸收线分解产物引起的炎性刺激有关，因此CCI模型引起的疼痛受两方面因素的影响，作用机制较为复杂。

建模方法：

1.手术器械消毒，结扎线消毒；

2.大鼠麻醉后，一侧后肢剃毛，消毒；

3.剪刀沿坐骨剪开一个1cm左右的开口，分离筋膜；钝性分离肌肉，使坐骨神经主干暴露于视野；

4.用玻璃分针挑出坐骨神经主干，玻璃分针辅助穿线，对坐骨神经进行4道结扎，间隔1mm，力度以结扎第一道时动物脚趾轻微抖动为宜；

5.结扎后对皮肤进行缝合，消毒。

检测方法和结果：

机械痛测定方法（Ascending测试法）

1.将试验动物放置在机械痛金属网架上静置30 min-1 h，待动物不再张望、探究、较安静后开始测试；

2.试验动物安静后用Von-Frey纤维丝缓慢轻柔的刺激待测后肢足底使纤维丝弯曲，持续2-3s观察动物缩足反应。按照纤维丝克数从小到大的顺序逐一刺激受试动物，每一个克数的纤维丝连续刺激5次，每次刺激间隔至少10s。若出现的阳性反应小于3次，则使用较大一级的纤维丝重复上述操作，当测试第一次出现3次或3次以上的阳性反应，则该纤维丝为该动物的疼痛阈值（每只动物测2次测试，取其平均值）。

3.动物若由于刺激而出现抬足、躲避或舔足动作反应，则标记为阳性（×），由于身体活动而引起的缩足反应则不算在内；若没有上述表现，则标记为阴性（О）。

4.纤维丝克数：Mouse（g）： 0.16、0.40、0.60、1.0、1.4、2.0切断值为2.0g；Rat（g）： 0.60、1.0、1.4、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、15.0切断值为15.0g。

热板法：

1.将试验动物放置在测试室适应15-30min；

2.仪器准备：将热板温度调定52.5℃（用于大鼠，小鼠55℃）；

3.将动物放到热板上观察该动物，直到它表现出伤害性反应，例如舔爪子、跺脚、跳跃和逃离热板（每只测试两次，间隔至少10min）；

4.将动物从热板中取出，记录其反应的时间。对于在截止时间之前没有反应的动物，记录截止时间（30s）；

5.筛选出痛阈为10-30秒的实验动物。